Inseminación artificial conyugal u homóloga (IAC/IAH)

Definición

Es el procedimiento donde se depositan los espermatozoides previamente preparados de la pareja en el aparato reproductor de la mujer en periodo ovulatorio.

Existen diversas variantes según el lugar anatómico donde se dejan los espermatozoides: cervical, intraperitoneal, intratubárica o intrauterina. La más utilizada y con mejores resultados globales es la inseminación intrauterina (1).

El objetivo de la inseminación es acortar el camino recorrido de los espermatozoides hasta contactar con los ovocitos, eludiendo los obstáculos químicos o físicos como el ph ácido de la vagina y las criptas cervicales.

Según datos de la ESHRE se realizaron 144.509 ciclos en Europa en el año 2008(2). La inseminación artificial conyugal es una técnica ampliamente utilizada por ser una técnica de baja complejidad, con estimulación y preparación del semen sencillas y con pocas complicaciones, sin necesidad de restringir la actividad de la paciente (3).

Indicaciones (4) (5)

  • Factor masculino.
    • Alteraciones leves o moderadas del semen.
      • Un exceso de líquido seminal puede ser tóxico y diluir el esperma.
      • La viscosidad elevada puede dejar retenidos los espermatozoides.
      • Oligoastenozospermia con REM superior a 3 millones.
  • Factor sexual, por incapacidad de depositar el esperma mediante relaciones sexuales.
    • Masculino: eyaculación precoz, impotencia psicógena o neurógena o hipospadias.
    • Femenina: vaginismo.
  • Factor cervical.
    • Alteraciones físicas por estenosis y tumoraciones.
  • Parejas serodiscordantes que precisan lavado seminal por varón VIH positivo para evitar la transmisión horizontal.
  • Esterilidad de origen desconocido.
  • Factor ovulatorio como el síndrome del ovario poliquístico, la insuficiencia del cuerpo lúteo, alteraciones de la fase folicular y la anovulación.
  • Endometriosis leve (grado I-II de la American Fertility Society) sin afectación tubárica.

El semen habitualmente se utiliza en fresco, pero puede provenir de una muestra criopreservada siempre que tengamos un REM suficiente después de la descongelación. En los casos excepcionales en los que se utilice semen congelado puede ser precisa una acumulación de varias muestras para obtener un mínimo de REM.

Requisitos mínimos:

  • Histerosalpingografía que evidencie permeabilidad tubárica.
  • Seminograma con test de capacitación superior a 3 millones.

El REM (recuento de espermatozoides móviles) es el procesamiento de la muestra con el objetivo seleccionar la población de espermatozoides de mejor calidad, además de eliminar microrganismos, el plasma seminal y las células contaminadas.

Se han desarrollado diferentes técnicas sin destacar ninguna por encima de las otras como(6): el centrifugado-lavado, el swim-up, la centrifugación diferencial en gradientes de Percoll, la filtración en columna de lana de vidrio o la filtración en columnas de gel.

Factores de buen pronóstico (7)

  • Edad de la mujer inferior a 30 años.
  • Ovulación multifolicular.
  • Buena reserva ovárica.
  • Ausencia de factor tubárico.
  • Ausencia de endometriosis.
  • Ausencia de antecedentes quirúrgicos pélvicos.
  • REM superior a 5 millones/ml.
  • Realización de menos de 4 ciclos.

Ejecución de la técnica de IAC en Eugin

Fase de estimulación(8)

Existen varias posibilidades de estimulación(9). Nosotros optamos por el uso de gonadotrofinas. La pauta de inicio variará entre 50 y 100 UI ajustándola a las características de la paciente (IMC, marcadores de reserva ovárica, respuesta a un ciclo previo y edad) con el objetivo de realizar una estimulación suave para conseguir un desarrollo bifolicular(10).

Normalmente iniciamos la estimulación el 3º día del ciclo y programamos el primer control tras 4-5 días de estimulación.

El control folicular siempre consiste en una ecografía con medición de la media de los diámetros mayores de los folículos en crecimiento y el espesor del endometrio; y un control hormonal que engloba el estradiol, la LH y la progesterona, de forma que se realiza un seguimiento exhaustivo del ciclo. La programación de los controles sucesivos están sujetos a los resultados de los controles previos del ciclo en marcha y del ciclo precedente. No utilizamos fármacos de frenación hipofisiaria, salvo en algunas excepciones, al no demostrar que se obtenganmejores resultados(11)

Descarga ovulatoria

Se programará la descarga generalmente con Ovitrelle 250 microgramos entre 36-42 horas previas a la inseminación cuando tengamos un folículo con un diámetro medio ≥17mm, y valores hormonales concordantes. Si el resultado del estudio hormonal indica un pico de LH prematuro natural, se ajustará el horario de la inseminación al caso concreto.

La técnica de inseminación

El día de la inseminación la pareja masculina debe dejar una nueva muestra de semen, preferiblemente después de una abstinencia de entre 3-5 días. Se procederá entonces a la capacitación de la muestra seminal. Una vez capacitada la muestra, se procede a la inyección de ésta dentro del útero. Posteriormente, la mujer permanece estirada 10 minutos en la camilla y después puede continuar con una vida normal. Según la evidencia actual no podemos afirmar que una doble inseminación aumente la tasa de éxito(12) (13). A ello hay que añadir que, el hecho de realizar determinaciones de LH, progesterona y estradiol en cada control, nos permite acotar y sincronizar la inseminación con la ovulación de una forma mucho más idónea.

Soporte de la fase lútea

Recomendamos la aplicación de 200mg de progesterona micronizada por vía vaginal a partir de la noche de la IAC(14,15) (16,17)y aconsejamos test de embarazo 14 días después.

Es un procedimiento sencillo y adecuado si está bien indicado. Hay que evitar la prolongación indefinida en el tiempo y la repetición ilimitada de ciclos.

Bibliografía

(1) O’Brien P, Vandekerckhove P. WITHDRAWN: Intra-uterine versus cervical insemination of donor sperm for subfertility. Cochrane Database Syst Rev 2007 Jul 18;(4)(4):CD000317.

(2) Ferraretti AP, Goossens V, de Mouzon J, Bhattacharya S, Castilla JA, Korsak V, et al. Assisted reproductive technology in Europe, 2008: results generated from European registers by ESHRE. Hum Reprod 2012 Sep;27(9):2571-2584.

(3) Katzorke T, Kolodziej FB. Significance of insemination in the era of IVF and ICSI. Urologe A 2010 Jul;49(7):842-846.

(4) Bry-Gauillard H, Coulondre S, Cedrin-Durnerin I, Hugues JN. Benefits and risks of ovarian stimulation before intrauterine insemination. Gynecol Obstet Fertil 2000 Nov;28(11):820-831.

(5) Bajo J, Coroleu B. Fundamentos en Reproducción. Madrid: Panamericana; 2009.

(6) Boomsma CM, Heineman MJ, Cohlen BJ, Farquhar C. Semen preparation techniques for intrauterine insemination. Cochrane Database Syst Rev 2007 Oct 17;(4)(4):CD004507.

(7) Merviel P, Heraud MH, Grenier N, Lourdel E, Sanguinet P, Copin H. Predictive factors for pregnancy after intrauterine insemination (IUI): an analysis of 1038 cycles and a review of the literature. Fertil Steril 2010 Jan;93(1):79-88.

(8) Veltman-Verhulst SM, Cohlen BJ, Hughes E, Heineman MJ. Intra-uterine insemination for unexplained subfertility. Cochrane Database Syst Rev 2012 Sep 12;9:CD001838.

(9) Cantineau AE, Cohlen BJ, Heineman MJ. Ovarian stimulation protocols (anti-oestrogens, gonadotrophins with and without GnRH agonists/antagonists) for intrauterine insemination (IUI) in women with subfertility. Cochrane Database Syst Rev 2007 Apr 18;(2)(2):CD005356.

(10) van Rumste MM, Custers IM, van der Veen F, van Wely M, Evers JL, Mol BW. The influence of the number of follicles on pregnancy rates in intrauterine insemination with ovarian stimulation: a meta-analysis. Hum Reprod Update 2008 Nov-Dec;14(6):563-570.

(11) Cantineau AE, Cohlen BJ, Klip H, Heineman MJ, Dutch IUI Study Group Collaborators. The addition of GnRH antagonists in intrauterine insemination cycles with mild ovarian hyperstimulation does not increase live birth rates–a randomized, double-blinded, placebo-controlled trial. Hum Reprod 2011 May;26(5):1104-1111.

(12) Polyzos NP, Tzioras S, Mauri D, Tatsioni A. Double versus single intrauterine insemination for unexplained infertility: a meta-analysis of randomized trials. Fertil Steril 2010 Sep;94(4):1261-1266.

(13) Osuna C, Matorras R, Pijoan JI, Rodriguez-Escudero FJ. One versus two inseminations per cycle in intrauterine insemination with sperm from patients’ husbands: a systematic review of the literature. Fertil Steril 2004 Jul;82(1):17-24.

(14) Feinberg EC, Beltsos AN, Nicolaou E, Marut EL, Uhler ML. Endometrin as luteal phase support in assisted reproduction. Fertil Steril 2013 Jan;99(1):174-178.

(15) van der Linden M, Buckingham K, Farquhar C, Kremer JA, Metwally M. Luteal phase support for assisted reproduction cycles. Cochrane Database Syst Rev 2011 Oct 5;(10):CD009154. doi(10):CD009154.

(16) Erdem A, Erdem M, Atmaca S, Guler I. Impact of luteal phase support on pregnancy rates in intrauterine insemination cycles: a prospective randomized study. Fertil Steril 2009 Jun;91(6):2508-2513.

(17) Cohlen BJ. Should luteal phase support be introduced in ovarian stimulation/IUI programmes? An evidence-based review. Reprod Biomed Online 2009;19 Suppl 4:4239.

Última actualización: noviembre 2017